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检者。排除标准:(1)年龄 <18 岁;(2)合并免疫 毒、支原体、多重感染和未知病原;按照初发感染部位
系统疾病、恶性肿瘤;(3)近半年使用免疫抑制剂; 分为肺、血液、腹腔、肝胆系统、泌尿系统、皮肤和软
(4)临床资料不完整;(5)妊娠妇女。脓毒症组、非 组织、中枢神经系统和其他。
脓毒症组和对照组性别、年龄比较,差异无统计学意义 1.2.3 人外周血单个核细胞的分离 采用 Ficoll 密度梯
(P>0.05),见表 1。 度离心法。向清洁无菌离心管中加入 2 ml 人淋巴细胞
将复苏后仍需升压药维持平均动脉压≥ 65 mm Hg 分离液(天津市灏洋生物制品科技有限责任公司),再
(1 mm Hg=0.133 kPa)且血乳酸>2 mmol/L定义为休克, 将人外周静脉血(紫色管)1 ml 与经高压灭菌的 0.9%
将脓毒症患者进一步分为非休克亚组和合并休克亚组。 氯化钠溶液 1 ml 均匀混合后缓慢加入含有 2 ml 人淋巴
本研究经武汉大学人民医院医学伦理学委员会批准 细胞分离液的上层,3 500 r/min 离心 25 min(离心半径
(批号:WDRY2020-K223),并豁免患者知情同意。 为 16 cm),离心后可观察到离心管液体由下至上分为
3 层,取出一二层交界处以单核细胞为主的白色云雾状
表 1 三组研究对象一般资料比较 液体,加入 4 ml 无菌 0.9% 氯化钠溶液中,充分混匀,
Table 1 Comparison of general information of three groups of participants
1 500 r/min离心10 min(离心半径为16 cm),重复洗2次,
性别〔n(%)〕 年龄
组别 例数 即可得目的细胞。
男 女 ( ±s,岁)
对照组 95 53(55.8) 42(44.2) 57.8±12.7 1.2.4 人外周血单个核细胞总 RNA 提取 采用 Trizol
非脓毒症组 113 58(51.3) 55(48.7) 60.4±15.7 试剂盒(美国 Invitrogen 公司,15596026)提取细胞总
脓毒症组 110 64(58.2) 46(41.8) 61.4±14.8 RNA,提取完毕后利用 Nanodrop 2000C 紫外 - 可见分
2
χ (F)值 1.090 1.877 a 光光度计(美国 Thermo 公司)测定 RNA 浓度及纯度,
P 值 0.580 0.155 于 -80 ℃保存备用。
a
注: 为 F 值
1.2.5 TLR4 mRNA 表达水平检测 使用 Premier 6.0 设
1.2 研究方法 计 TLR4 和 GAPDH 引物,采用 PubMed 对设计的引物
1.2.1 实验室检查指标 脓毒症组和非脓毒症组患者入 特异性进行验证,确定最终引物序列,熔解曲线峰单一,
院确诊并空腹6~8 h后,于次日清晨(对照组于体检当天) 可见引物特异性良好(图 1),引物序列见表 2。采用
分别采集静脉血 2 ml 置于一次性真空采血管(已加乙 Takara 逆转录试剂盒(日本 Takara 公司,RR036A)将
二胺四乙酸二钾抗凝剂的紫色管)中颠倒混匀;另采集 细胞总 RNA 逆转录为 cDNA,并采用实时荧光定量 PCR
静脉血 4~6 ml 室温静置 30 min 后,以转速 3 500 r/min(离 (RT-PCR)试剂盒(日本 Takara 公司,RR901A)对
心半径 16 cm)离心 5 min,分离血清。在 2 h 内完成以 TLR4 mRNA 表达水平进行检测,RT 反应条件:37 ℃反
下指标的检测:红细胞计数(RBC)、白细胞计数(WBC)、 应 15 min,85 ℃反应 5 s。在 ABI ViiA7 实时荧光 PCR
中性粒细胞计数(NEU)、血红蛋白(Hb)、血细胞 仪上设置 PCR 反应程序:(1)95 ℃ 40 s;(2)95 ℃
比容(HCT)、血小板计数(PLT)采用日本 Sysmex 公 30 s,64 ℃ 90 s;(4)95 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃
司生产的 XN-9000 全自动血细胞分析仪及其配套试剂 15 s,循环数为 50,于每次循环末收集荧光信号。
进行检测;丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天门冬氨酸氨 1.3 统计学方法 采用 SPSS 25.0 软件对实验数据进行
基转移酶(AST)、直接胆红素(DBiL)和总胆红素(TBiL) 统计分析。计量资料采用单样本 Kolmogorov-Smirnov 法
水平采用西门子公司生产的 AD2400-1 生化分析仪进行 检验各组数据是否符合正态性,呈正态分布的计量资料
测定;PCT 采用罗氏诊断公司生产的 cobas8000e801 全 以( ±s)表示,多组间比较采用方差分析,组间进一
自动化学发光免疫分析仪进行检测。所有指标检测均在 步两两比较采用 LSD-t 检验;非正态分布采用 M(QR)
试剂盒说明书规定的时间内完成,且严格遵守实验相关 表示,多组间比较采用 Kruskal-Wallis H 检验,两两比
操作规程。 较采用 Mann-Whitney U 检验,采用二元 Logistic 回归
1.2.2 qSOFA、 感 染 病 原、 感 染 部 位 收 集 研 究 分析得到 TLR4 mRNA 与 PCT 联合的回归模型,并绘制
对象首次实验室检查结果和临床资料,分别计算 TLR4 mRNA 与 PCT 单独或联合检测诊断脓毒症的受试
qSOFA。qSOFA 内容:呼吸频率≥ 22 次 /min、收缩压 者工作特征(ROC)曲线,并计算曲线下面积(AUC)、
2
≤ 100 mm Hg、意识改变计为 1 分,总分 3 分。根据血 灵敏度、特异度和约登指数。计数资料采用 χ 检验。
培养(Bac T/Alert 3D 全自动血培养仪,Bruker 基质辅 以 P<0.05 为差异有统计学意义。
助激光解析飞行时间质谱仪),或细菌基因组 DNA 提 2 结果
取试剂盒(博奥生物集团有限公司)和呼吸道病毒检测 2.1 实验室检查指标比较 三组 RBC、WBC、NEU、
试剂盒(美国 Diagnostic Hybrids Inc)的检测结果,将 Hb、HCT、PLT、ALT、AST、DBiL 比 较, 差 异 有 统
感染病原种类分为革兰阳性菌、革兰阴性菌、真菌、病 计学意义(P<0.05),三组 TBiL 比较,差异无统计学