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的切片放入苏木素水溶液中染色 3 min,盐酸乙醇分化 扩增。PCR 扩增产物通过 2% 琼脂糖凝胶电泳进行检测,
液分化 15 s,稍水洗,返蓝液返蓝 15 s,流水冲洗,伊 并对目标片段进行切胶回收,将 PCR 扩增回收产物进
红染色 3 min,流水冲洗,脱水,透明,封片,镜检。 行荧光定量,之后进行高通量测序。使用 QIIME 软件,
1.7 透射电镜观察 各组组织样品 2.5% 戊二醛固定 调用 UCLUST 这一序列比对工具,高通量测序所得的序
2 h 以上,用 0.1 mmol/L PBS 漂洗,1% 锇酸固定液固定 列按 97% 的序列相似度进行归并和 OTU 划分,并选取
2 h,0.1 mmol/L磷酸漂洗梯度乙醇(50%~90%)溶液脱水, 每个 OTU 中丰度最高的序列作为该 OTU 的代表序列,
再丙酮脱水,包埋固化,切片切成厚度为 70 nm 薄片。 然后比对 RDP(Ribosomal Database Project)数据库得到
3% 醋酸铀 - 枸橼酸铅双染,透射电镜观察。 分类鉴定结果。
1.8 流式细胞检测 辅助性 T 细胞(Th)1 细胞检测: 1.12 统计学方法 采用 SPSS 19.0 软件进行统计学分
各组取 100 μl 血液至于 12 孔板中,加入 150 μl 1640 析,计量资料以( ±s)表示,多组间比较采用单因素
完全培养基,加入1 μl PMA/Ionomycin mixture佛波酯/离 方差分析,组间两两比较采用 LSD-t 检验。以 P<0.05
子霉素混合物,放入培养箱中孵育 30 min 后加入 1 μl 为差异有统计学意义。
BFA/Monensin Mixture,放入培养箱中孵育 24 h。结束 2 结果
后,将血液转至 EP 管中离心,弃 150 μl 上清,将细 各组小鼠均造模成功。
胞吹匀加入 CD4 APC-CY7 各 5 μl,避光孵育 15 min, 2.1 HE 染色分析 各组小鼠肠组织 HE 染色显示:
1 ml PBS,400×g 离心 5 min 洗 2 次,弃上清。加入 Control 组大鼠结肠黏膜完整,腺体排列整齐,无炎性细
500 μl Fixation and Permeabilization Solution 避 光 固 定 胞浸润,层次紧密,结构清晰;CUCM 组与 DUCM 组肠
破 膜 40 min,400×g 离 心 5 min 后, 加 入 1 ml 1×BD 黏膜表面出现不同程度的缺损或脱落坏死,部分形成溃
TM
Perm/Wash buffer,清洗 2 次,再 100 μl 1×BD Perm/ 疡,隐窝消失,固有层大量炎性细胞浸润,黏膜肌层增
TM
Wash buffer 重悬细胞,加入 5 μl IFN-γ PE,避光孵 厚水肿,黏膜下层血管扩张,较多红细胞、嗜酸粒细胞
TM
育 15 min。1 ml 1×BD Perm/Wash buffer,清洗 2 次, 浸 润;CUCM+FMT 组、CUCM+5-ASA 组、DUCM+FMT
TM
再 500 μl 1×BD Perm/Wash buffer 重悬细胞,上流式 组、DUCM+5-ASA 组肠黏膜基本完整,极少数仍见残
仪检测。Th2 细胞检测步骤同上,CD4 APC-CY7 孵育 缺断裂,腺体增生,排列尚整齐,杯状细胞增多,出血
重悬后,Th2 检测加入 IL-4 PE 孵育。 点消失,可见少量炎性细胞浸润,并且 DUCM+FMT 组
1.9 血常规检测 取各组血液充分抗凝后,室温条件 与 CUCM+FMT 组相比,前者腺体较后者排列整齐并紧
下,采用动物血液细胞分析仪 4 h 内完成血常规上机检 密,残缺断裂也较后者少,见图 1。
测,主要检测白细胞计数(WBC)、红细胞计数(RBC)、 2.2 透射电镜分析 各组肠组织透射电镜超微结构显
血小板计数(PLT)和血红蛋白(HGB)。 示:Control 组微绒毛形态规则,排列整齐,较多杯状细
1.10 疗效指数评估 比较各组 UC 小鼠 FMT 干预前后 胞,线粒体丰富,嵴结构清楚,粗面内质网未见改变;
疾病活动指数的变化,疾病活动指数从体质量变化(体 CUCM 组与 DUCM 组上皮细胞表面微绒毛稀疏,长短不
质量不变:0 分,体质量下降 1%~5%:1 分,体质量下 一,形态不规则,细胞连接间隙增宽,杯状细胞减少,
降 6%~10%:2 分,体质量下降 11%~15%:3 分,体质 胞浆内有空泡,线粒体肿胀,部分嵴消失,个别内质网
量下降 >15%:4 分)、大便性状(大便正常:0 分,大 扩张或呈空泡变化;CUCM+FMT 组、CUCM+5-ASA 组、
便松散:2 分,腹泻:4 分)、便血(无便血:0 分, DUCM+FMT 组、DUCM+5-ASA 组微绒毛较为致密,形
隐血阳性:2 分,显性出血:4 分)3 方面进行综合评 态正常,杯状细胞数目较多,线粒体轻微肿胀,粗面
价。疾病活动指数 =(体质量下降分数 + 大便性状分数 内质网病变不明显,并且 DUCM+FMT 组与 CUCM+FMT
+ 便血分数)/3。计算 CUCM 及 DUCM 的疗效指数,依 组相比,前者的微绒毛较后者紧密,杯状细胞也较后者
据尼莫地平法:疗效指数 =(治疗后疾病活动指数 - 治 多,见图 2。
疗前疾病活动指数)/ 治疗前疾病活动指数 ×100%,比 2.3 流式细胞检测 各组小鼠 Th1、Th2 细胞含量比较,
较 FMT 干预 CUCM 及 DUCM 的疗效指数差别。 差异均有统计学意义(P<0.001),见表 1。
1.11 16S rRNA 高通量测序技术测定菌群多样性 各组 2.4 血常规检测 各组小鼠 WBC、RBC、PLT、HGB
小鼠肠道内容物过滤后,分为 3 个测量组,分别为 1、2、 比较,差异均有统计学意义(P<0.001),见表 2。
3,提取总 DNA 分光光度计进行定量。通常以微生物核 2.5 疗 效 指 数 分 析 CUCM+FMT 组 疗 效 指 数 为
糖体 RNA 等能够反映菌群组成和多样性的目标序列为 (-31.03±4.71)%,CUCM+5-ASA 组 疗 效 指 数 为
靶点,根据序列中的保守区域设计相应引物,进行 PCR (-62.53±7.53)%,DUCM+FMT 组 疗 效 指 数 为